Что такое in vivo и in vitro в медицине

В современной медицине, два термина In Vivo и In Vitro использованы для обозначения различных методов и исследований. Термин In Vivo означает «в живом организме», в то время как термин In Vitro означает «в стеклянной посуде» или «вне организма». Они имеют решающее значение в области научных исследований, различаются между собой и способствуют пониманию различных методов исследований.

In Vivo и In Vitro — это два важных метода, используемые в современной медицине для исследования болезней. Все они исследуют болезнь в различных окружениях, и хотя их цель одна и та же — выяснить характеристики болезней, но методы исследования, технологии и применения различаются.

Использование этих терминов в медицине может быть критически важным при определении, как происходит болезнь и как лучше всего ее лечить. В статье мы погрузимся в детали различий между In Vivo и In Vitro, чтобы предоставить более четкое представление о каждом методе и его применениях в медицине.

Что такое in vivo?

В современной науке in vivo — это термин, обозначающий исследования, которые проводятся на организме в живом состоянии, т.е. внутри живого организма. В отличие от in vitro, которое относится к исследованиям, проводимым в искусственных условиях, in vivo открывает возможности для изучения более сложных процессов, происходящих в организме целиком.

Генетика и молекулярная биология — in vivo, in vitro, in silico

Основным методом исследования in vivo является проведение экспериментов на животных, но также могут использоваться и культуры клеток, которые предназначены для внедрения в организм в качестве терапевтического средства. Важно отметить, что при проведении исследований in vivo необходимо соблюдать этические стандарты и обязательные правила по защите животных.

Применение in vivo исследований широко охватывает различные области науки и медицины. Так, например, они могут использоваться для изучения эффективности лекарственных препаратов, проведения биомедицинских исследований, изучения механизма развития болезней и многого другого. Важным преимуществом исследований in vivo является возможность получения более точных результатов благодаря более близкому к реальным условиям организма.

Что такое in vitro?

Концепция in vitro происходит от латинских слов «in vitro», что означает «в стекле». Это означает, что исследования, проводимые in vitro, происходят в контролируемой среде вне живого организма. В результате этого исследования могут быть проведены на клетках, тканях или веществах, различных от того, что находится в организмах вживую.

Например, in vitro эксперименты могут проводиться на веществах, тканях или органах, выращенных в лаборатории, что позволяет сократить риски эксперимента на живых организмах. Кроме того, in vitro исследования могут дать информацию о культуре клеток, анализе состава и свойств материалов, таких как металлы, стекло, полимеры и др.

В настоящее время in vitro методы широко используются в клинических экспериментах для разработки новых лекарств и медицинских технологий. Они также широко используются в биотехнологии, в частности в генной инженерии, где они могут быть использованы для изучения функций генов и подготовки клеток для производства белков и других полезных материалов.

Основные различия между in vivo и in vitro

In vivo (лат. «в живом») – это исследование, проводимое в живом организме. Обычно это происходит на живых животных или людях. In vivo-исследования используют в медицине для проверки лекарственных препаратов перед их выпуском в широкую продажу.

Читать еще: Чем лингводидактика отличается от методики: разбираемся в тонкостях

In vitro (лат. «в стекле») – это исследование, проводимое в контролируемых условиях вне организма. В этом случае использование животных не требуется. Клетки и ткани могут выращиваться в инкубаторе, а их функционирование может изучаться в культуральной среде. In vitro-исследования используют, например, для изучения эффектов новых лекарственных препаратов или отслеживания мутационных изменений в клетках.

Следует отметить, что in vivo-исследования рассматривают связь между феноменом и организмом, в то время как in vitro-исследования рассматривают отдельные компоненты феномена. Преимущество in vitro-исследований – в их скорости и удобстве, но ценность in vivo-исследований заключается в том, что они позволяют исследовать более сложные системы, чем простые культуры клеток. Кроме того, in vivo-исследования позволяют изучать взаимодействие фармакологических препаратов с другими системами организма, что может быть не разу необходимо в случае нахождения их в широкой продаже.

• Выводы
• in vivo-исследования проводятся на живых организмах, а in vitro-исследования в искусственных условиях вне организма
• in vivo-исследования имеют большую ценность благодаря изучению взаимодействия фармакологических препаратов с другими системами организма
• in vitro-исследования могут быть полезны для изучения нужного компонента феномена, в то время как in vivo-исследования дают детальную информацию о системе в целом

Применение in vivo

Применение in vivo находит свое применение в медицинской практике, как способ исследования живых организмов. Этот метод наиболее приближен к реальным процессам, происходящим в организме человека или животного, что позволяет делать более точные выводы.

In vivo используется для испытания действий лекарственных препаратов, причин возникновения болезней, поиска причинно-следственной связи в различных процессах, а также для оценки безопасности и эффективности новых товаров и материалов.

В исследованиях in vivo на первый план выходят этические и юридические аспекты, так как используются живые организмы. В связи с этим, для проведения таких исследований требуются специальные разрешения и лицензии на проведение экспериментов.

Применение in vivo является важной частью медицинских исследований и позволяет более точно изучать возможности лекарственных препаратов и новых технологий в здравоохранении.

Применение in vitro в научных и медицинских исследованиях

Введение

In vitro – это метод исследования, который применяется для проведения экспериментов в контролируемых условиях вне организма животного или человека. В отличие от in vivo, где эксперименты проводятся в организме, in vitro позволяет изучать процессы, происходящие на клеточном и молекулярном уровнях, применяя различные методы.

Применение в медицинских исследованиях

In vitro широко используется в медицинских исследованиях для изучения различных заболеваний и поиска новых лекарственных препаратов. Например, в исследованиях опухолевых клеток in vitro выявляются механизмы развития рака, а также тестируются новые лекарства для лечения онкологических заболеваний.

Применение в научных исследованиях

In vitro также широко применяется в научных исследованиях, в том числе в генетике и молекулярной биологии. Например, in vitro можно изучать взаимодействие белков, процессы клеточной дифференциации и репликацию ДНК.

Читать еще: Чем отличается меренговый рулет от павлова: разбираемся в схожих десертах

Преимущества и недостатки

Применение in vitro имеет свои преимущества и недостатки. Среди преимуществ можно отметить возможность проводить эксперименты в контролируемых условиях, исключая влияние различных факторов, которые могут повлиять на результаты эксперимента in vivo. Однако in vitro не всегда является адекватной моделью для in vivo, поскольку эксперименты проводятся вне организма, и не учитываются сложности, связанные с взаимодействием между различными клетками и тканями в организме.

In vitro – важный метод исследований, который позволяет изучать различные процессы, происходящие на клеточном и молекулярном уровнях в контролируемых условиях. Метод широко используется в медицинских и научных исследованиях, однако не всегда может быть адекватной моделью для in vivo.

Преимущества использования in vivo

In vivo — это метод исследования, которое проводится непосредственно в организме живого существа. Этот метод обладает некоторыми преимуществами над методом in vitro.

• Ближе к реальности. Использование in vivo позволяет изучать процессы, происходящие в организме в более естественных условиях.
• Более точная оценка безопасности лекарств и продуктов. In vivo-исследования позволяют более точно оценить безопасность продукта или лекарства, поскольку в организме проверяются действующие вещества и их возможные побочные эффекты.
• Изучение процессов заболевания. Использование in vivo методов позволяет более детально изучать процессы заболевания и воздействие лекарственных средств на них.
• Получение более точных результатов. In vivo-исследования обеспечивают получение более точных результатов благодаря использованию живого объекта как модели, что позволяет изучить различные процессы, происходящие в организме.

Несмотря на эти преимущества, метод in vivo имеет и некоторые недостатки, такие как более высокая стоимость и возможность нарушения прав животных, которые используются в качестве объектов исследования. Однако, в целом in vivo-исследования являются более полезными и точными.

Преимущества in vitro

Метод in vitro (лат. «в стекле») используется для изучения биологических процессов, протекающих в искусственных условиях вне организма. Этот метод имеет ряд преимуществ перед in vivo (лат. «в живом организме»), например:

• Контролируемые условия: в искусственных условиях можно контролировать множество факторов, таких как температура, pH, концентрация веществ и другие, что позволяет изучать определенные механизмы и процессы в более точных и управляемых условиях.
• Экономическая эффективность: in vitro методы обладают более низкой стоимостью по сравнению с in vivo, за счет отсутствия необходимости в содержании и уходе за живыми организмами.
• Полная манипулятивная контролируемость: при использовании in vitro методов, можно контролировать все параметры исследования, что уменьшает вероятность неожиданных результатов и шире открывает возможности для эксперимента.
• Подходит для многих видов исследования: in vitro методы просты в использовании и могут быть адаптированы для широкого спектра исследовательских задач, включая анализ белковой активности, токсических свойств химических веществ и многих других аспектов жизнедеятельности клеток.

Безусловно, in vitro методы не могут полностью заменить in vivo методы, но они являются эффективным инструментом для получения информации о жизнедеятельности клеток и молекул в практически контролируемых условиях.

Недостатки in vivo

В исследованиях in vivo наблюдается множество недостатков, которые могут приводить к неточным результатам и затруднять интерпретацию полученных данных.

• В in vivo экспериментах необходимо использовать животных, что может быть нравственно неприемлемо и вызывать этические вопросы.
• Животные могут иметь аномалии, возрастные отклонения, болезни, которые могут повлиять на результаты исследования.
• Влияние других факторов на эксперимент не всегда возможно контролировать, например, природные факторы, такие как температура и влажность воздуха.
• Интерпретация результатов исследования в in vivo сложна из-за его комплексности и множества факторов, что может привести к разным толкованиям.
• В in vivo экспериментах невозможно изучить процессы на клеточном уровне и контролировать условия воздействия на организм.

Читать еще: Наркомания и наркотизм: в чем разница?

Все эти факторы создают проблемы в интерпретации результатов in vivo, поэтому, если это возможно, исследования in vitro предпочтительнее.

Недостатки in vitro

In vitro — метод исследования, в котором проводят исследования вне живого организма. Несмотря на достоинства данного метода, у него также есть некоторые недостатки.

• Невозможность учета взаимосвязей. Во время использования in vitro, невозможно учитывать все взаимодействия и реакции, которые происходят в живых организмах. Кроме того, часто не учитываются факторы, связанные с окружающей средой и условиями ее воздействия на организм.
• Ошибка при воспроизведении. In vitro не гарантирует точность воспроизведения объема реакций, происходящих в живом организме. Следовательно, результаты экспериментов могут отличаться от реальных условий.
• Стоимость. Интерпретация результатов in vitro требует немалых затрат на материалы, инструменты и лабораторное оборудование.

Тем не менее, in vitro — это важный метод исследования, который позволяет углубиться в изучение многих биологических и химических процессов.

Отзывы

Екатерина

Я закончила биологический факультет университета много лет назад и с тех пор не имела возможности углубленно изучать медицинские исследования. Однако, почитав эту статью, получила много полезной информации!

Самое главное — я теперь точно понимаю, чем отличаются in vivo и in vitro, а именно, в первом случае исследования проводятся в живых организмах, а во втором — в условиях лаборатории. Понять эти различия можно и без специального образования, когда есть отлично написанные статьи, подобные этой. Я думаю, что такого рода материалы очень важны и нужны для профилактики и лечения заболеваний.

Я даже подумываю о том, чтобы продолжить свой образовательный путь в этой области, и может быть когда-нибудь смогу участвовать в реальных исследованиях. Спасибо автору за такую информативную и понятную статью! Буду с нетерпением ждать новых материалов на эту тему.

QueenBee

Статья очень интересная и информативная! Я никогда раньше не задумывалась об этих различиях, но теперь знаю больше. Большое спасибо автору за такой полезный материал.

Лилия Соколова

Полагаю, что многие люди слышали о терминах «in vivo» и «in vitro», но не понимают их связи с медицинскими исследованиями. Я, например, не знала, что in vivo означает изучение в живых организмах, а in vitro — в искусственных условиях. Статья очень доступно объясняет это и другие различия между ними, что очень здорово. Потому что эта тема может быть сложной для понимания для непрофессионалов. Я научилась многому новому, спасибо!

Источник: assma.ru

Методы диагностики ГЗТ (in vivo и in vitro)

б)кожно-аллергические пробы отличаются временем- и критериями оценки при учете: максимум их развития наблюдается через 24-48-72 часа. Реакция считается положительной при наличии инфильтрата на месте введения размером более 5 мм;

в)реакция подавления миграции макрофагов. Лимфоциты человека смешивают с предполагаемым антигеном, а через 18 часов в каплю полученной культуральной жидкости опускают капилляр, наполненный подвижными макрофагами или гранулоцитами и через, сутки измеряют степень их миграции из опытного и контрольного (без антигена) капилляров. Их отношение называется индексом подавления миграции.

г)реакция бластной трансформации лимфоцитов с фитогешгглютинлном или соответствующими антигенам проявляется в превращении лимфоцитов в более крупные молодые клетки — бласты, число которых подсчитывается в препарате на 200 лимфоцитов.

38. Иммунологическая толерантность. Определение, механизмы, биологическое значение.
Иммунологическая толерантность — неспособность организма специфически отвечать на действие антигена. Лежит в основе функционирования иммунной системы в норме и обеспечения ее ареактивности по отношению к антигенам тканей собственного организма.

Это явление было открыто П.Медаваром на мышах. В результате экспериментов оказалось, что врожденная толерантность к антигену (толерогену) возникает, когда происходит внутриутробный контакт организма с этим антигеном. В этом случае организм после рождения будет воспринимать данный АГ как «свое». В настоящее время такая толерантность объясняется тем, что в эмбриогенезе происходит гибель клонов-предшественников Т-лимфоцитов, способных взаимодействовать с толерогеном.

Кроме врожденной, существует также и приобретенная толерантность. Чаще всего это обратимый процесс. Приобретенная толерантность бывает 2-х видов’: высокодозовая и низкодозовая. Высокодозовая толерантность возникает при попадании в организм больших доз толерогена, особенно введенного на фоне подавления иммунитета (облучение, применение иммунодепресантов).

Такое большое количество АГ вызывать гибель реактивных к нему лимфоцитов. Низкодозовая толерантность возникает при введении малых доз определенных АГ. Считается, что в данном случае она опосредована активацией клеток-супрессоров, подавляющих иммунную реакцию. В целом же в настоящее время оба механизма поддержания толерантности (делеция клонов и их супрессия) рассматриваются как взаимодополнияющие.

Анергия — неотвечаемость на антиген, это обычно вариант высокодозовой толерантности на фоне подавления иммунного ответа.

39. Трансплантационный иммунитет. Антигены гистосовместимости I, II, III классов, роль в иммунном ответе. Типы трансплантационных реакций. Механизмы отторжения трансплантата.

Предупреждение.

возникает примерно через 1—2 нед. после трансплантации и сохраняется в течение от 1 мес. до нескольких лет. На протяжении этого периода повторная трансплантация сопровождается отторжением пересаженной ткани в более короткий срок.

Сенсибилизация обусловлена в первую очередь реакцией регионарных к трансплантату лимфатических узлов, через которые происходит отток лимфы от пересаженной ткани: далее включаются другие участки лимфоидной ткани хозяина. Иммунитет при_ аллотрансплантациях не обладает органной специфичностью, реакция имеет индивидуально специфический характер.

Она направлена как против той ткани, которая пересаживалась, так и против других тканей того же донора. Основным клеточным компонентом при этом является Т-популяция стимулированных лимфоцитов, хотя гуморальные факторы реципиента также принимают участие в формировании трансплантационного иммунитета.

В период реакции тканевой несовместимости установлено появление в крови реципиента антител, оказывающих комплементзависимое цитотоксическое, а также агглютинирующее действие на клетки донорской антигенной принадлежности. Антитела обнаружены также в трансплантате во время его гибели Полной ясности в механизме отторжения трансплантатов еще нет. Полагают, что генетически чужеродный трансплантат отторгается в результате инфильтрации пересаженной ткани лимфоцитами — Т-киллерами, которые оказывают разрушающее действие на клетки-мишени, выделяя биологически активное вещество — лимфотоксин. Разрушение лимфоцитами усиливается при воздействии иммунных антител (антителозависимый цитолиз).

В результате клеточной инфильтрации местно (в области трансплантата) достигается высокая концентрация иммунологических эффекторов, приводящая к его гибели. Иммунологическая реакция при пересадке аллогенных клеток может иметь прямо противоположную форму и исходить со стороны иммунокомпетентных клеток пересаженной ткани против организма реципиента — реакция трансплантата против хозяина (РТПХ). Эта реакция наблюдается преимущественно при трансплантации костного мозга, когда иммунная реактивность реципиента понижена.

Антигены главного комплекса гистосовместимости (МНС — Major histocompatibility complex). МНС у человека называются HLA (англ. Human leucocyte antigene). Молекулы гистосовместимости I и II классов кодируются генами системы гистосовместимости локусов А, В, С и D, которые располагаются в коротком плече 7 хромосомы. Они характеризуются выраженным разнообразием.

Молекулы 1 класса состоят из тяжелой цепи (45 кДа) нековалентно связанной с В-2 микроглобулином (12 кДа). Они могут быть фиксированы на мембране клеток, так и обнаруживаться в сыворотке и других жидкостях организма. Тяжелая цепь молекулы состоит из 3-х внеклеточных доменов, обозначенных — al (N-терминальный), а2 и аЗ, трансмембранной области и цитоплаэматического хвоста. Они экспедированы как на иммунокомпетентных, так и на соматических клетках.

Выявлено участие растворимых молекул I класса в различных этапах иммунного ответа: а) связывании антиНЬАантител; б) ингибиции цитотоксичности аутореактивных Т-лимфоцитов; с) формировании иммунологической толерантности.

Молекулы II класса распознавания являются продуктами DR, DQ и DP генов, гетеродимеры тяжелой (а) и легкой (в) гликопротеидных цепей. Молекулярная масса альфа цепи 30-34 кДа, а бэта — 26-29 кда. Внеклеточная часть молекулы представлена al и а2, или в1 и в2 и соединена небольшой трансиенбранной областью (30 аминокислот) и коротким цитоплазматическин доменом (15 аминокислот).

Они экспрессированы преимущественно на мембране иммунокомпетентных клеток. Антигены МНС I класса имеют все ядросодержащие клетки, а МНС II класса — только антигенпрезентирующие клетки. Антигены МНС I и II классов участвуют в презентации (представлении) клетками антигенного пептида Т-лимфоцитам: продукты МНС I класса презентируют (представляют) антигенный пептид CD8+ Т-лимфоцитам, а МНС II класса CD4+ Т-лимфоцитам. Имеются неклассические молекулы МНС, или МНС-подобные (например, CD1). Виды и механизмы реакций отторжения: раннее отторжение трансплантата

Основной механизм отторжения — клеточно опосредованный. Иммунный ответ похож на таковой при туберкулиновой пробе, вызывает разрушение трансплантата в течение дней — месяцев. Гистологически характеризуется мононуклеарной клеточной инфильтрацией трансплантата, кровоизлияниями и отеком. Из — за гипоксии нередко развивается фиброз. Такой вид отторжения можно затормозить с помощью иммуносупрессоров.

позднее отторжение трансплантата. Проявляется в основном у пациентов с ИДС. Патологическая картина отличается от (1.) тем, что вовлекается эндотелий сосудов, происходит его пролиферация с последующим сужением просвета сосудов, что приводит к ишемии и некрозу трансплантата. гипериммунное отторжение трансплантата

Проявляется в случаях, если антигены трансплантата раньше уже попадали в организм реципиента до текущей пересадки (при беременности, переливании крови, предыдущей трансплантации). Отторжение и деструкция развиваются в течение часов и даже минут. Реакция опосредована гуморально, характеризуется тромбозом мелких сосудов, инфарктом трансплантата, лизисом клеток на границе «трансплантат — хозяин». Процесс необратим и не предотвращается ни одним из известных методов иммуносупрессии.

Для предупреждения развития реакций отторжения необходимо:

типирование тканей по МНС, ABO, Rh; исключить «специфическую презентацию» – предыдущее попадание антигена трансплантата в организм хозяина; проводить иммуносупрессивную терапию до приживания трансплантата.

Понравилась статья? Добавь ее в закладку (CTRL+D) и не забудь поделиться с друзьями:

Источник: studopedia.ru

Зачем и как проводят радионуклидную диагностику?

Радионуклидная диагностика — это метод лучевой диагностики, основанный на регистрации излучения введённых в организм искусственных радиоактивных веществ (радиофармпрепаратов). Это исследование помогает изучить как организм в целом, так и клеточный метаболизм, что очень важно при онкологии.

Что такое радионуклидная диагностика?

Радионуклидная диагностика в медицине ― исследование, суть которого заключается в радиометрическом излучении. Радиация источается внутренними органами и тканями после введения специальных радиофармацевтических средств (РФП) внутрь пациента.

Эти средства отличаются радиоактивностью и не дают фармакодинамического эффекта на организм. Изотопные атомы накапливаются и рассредоточиваются в организме, таким образом отражая динамику протекающих процессов.

Данная методика позволяет визуализировать орган, качественно и количественно оценить показатели паренхимы. Однако она не воздействует на нормальные или аномальные процессы человеческого организма.

• ОФЭКТ (компьютерная томография);
• радиоизотопная диагностика;
• гамма-камеры.

Преимуществами процедуры являются:

• точность и информативность;
• безболезненность;
• малотравматичность;
• низкий риск осложнений;
• скорость обследования.

О том, что такое радионуклидная диагностика, можно узнать из видео от канала Отделение опухолей.

Показания к проведению диагностики

Показания для обследования:

• поражение миокарда;
• пороки сердца;
• нарушение сердечной гемодинамики;
• эмболия;
• рубцовые изменения на сердце;
• метастазы;
• инфекционные и воспалительные болезни;
• болезнь Альцгеймера;
• болезнь Паркинсона;
• деменция;
• аномалия щитовидной железы;
• работа почек и их кровоснабжения;
• онкологические заболевания ЖКТ;
• гепатобилиарная система.

Противопоказания к назначению обследования

Процедура имеет несколько противопоказаний:

• личная непереносимость к радиофармацевтическим средствам;
• беременность;
• лактация;
• высокая температура;
• острые заболевания психики;
• респираторные болезни;
• почечная и печеночная недостаточность.

Методы радионуклидной диагностики

К типам исследования относят методики in vivo и in vitro.

In vitro

Диагностика с использованием этой методики не предполагает введение внутрь организма РФП. Этот вариант отличается безопасностью, потому что метода основывается на извлечении паренхимы и жидкостей. Больной не получает даже минимума облучения, поэтому методика имеет широкое применение в онкологии.

In vivo

Тесты in vivo проводятся внутри организма пациента. Врачу нет необходимости делать забор биологического материала. Пациент вынужден принять радиофармацевтические средства.

Способы введения радионуклидов

Введение внутрь организма больного осуществляется несколькими способами:

1. Энтеральный. В этом случае вещества всасываются в кровь через кишечник. Находит применение для диагностирования аномалий щитовидной и паращитовидной желез.
2. Внутривенный. При помощи этого вида удается изучить внутренние органы и паренхиму.
3. Подкожный. С его помощью осуществляется изучение работы сосудистой и лимфатической систем. Радиофармацевтический препарат в некоторых случаях может быть введен прямо в лимфоузел.
4. Ингаляционный. Способ визуализации, при помощи которого можно исследовать состояние легких и кровообращение в головном мозге.
5. Внутримышечный. С помощью этого способа исследуется кровообращение в организме.
6. Спинномозговой. Осуществляется посредством введения в канал спинного мозга специальной иглы с препаратом.

Способы регистрации распределения радиоактивных веществ

• сцинтиграфия;
• сканирование;
• радиометрия;
• радиография;
• томография.

Сцинтиграфия

При помощи этого способа врач может визуализировать и тщательно изучить внутренний орган, а также исследовать степень накопления в нем препарата. Это позволяет вовремя обнаружить аномалии органов и различные патологические процессы.

Диагностирование происходит посредством гамма-камеры, которая при помощи йодида натрия фиксирует излучение радиофармацевтических препаратов.

Сканирования

При помощи сканирования можно получить двухмерную качественную картинку рассредоточения радионуклида по организму. Приспособление улавливает и фиксирует все излучения, а затем видоизменяет, превращая в штрихи-сканограммы, которые наносятся на обычную бумагу.

Метод сканирования с каждым годом теряет свою популярность, так как он занимает больше времени, чем сцинтиграфия.

Радиометрия

Радиометрия ― способ диагностики, при помощи которого врач может провести функциональный анализ органа.

Радиометрия может быть:

1. Лабораторная. В этом случае делается забор биологического материала.
2. Клиническая. Исследует одновременно все ведущие системы организма или определенный внутренний орган.

В лабораторном исследовании биологический образец устанавливается рядом со счетчиком, где радиометр фиксирует на бумаге результат. Пробы являются конкретными и точными и не требуют дополнительной консультации и вторичных тестов.

В медицинском исследовании радиоизотоп вводится непосредственно внутрь организма пациента. После этого счетчик радиометра записывает полученные данные, и информация выдается на приборе и оценивается в процентах.

Для обследования всего тела одновременно используется несколько детекторов. Они перемещаются вдоль тела пациента и определяют данные об уровне работы всех систем и внутренних органов.

Радиометрия не способна зафиксировать быстропротекающие процессы (кровоток, вентиляцию легких).

Радиография

Радиография применяется для регистрации скорости перемещения РФП. Излучение записывается детекторами и заносится на бумагу. Диагностика отличается простотой, однако нужно постараться, чтобы установить детекторы непосредственно на границах изучаемого внутреннего органа. Минус метода в том, нельзя провести визуальный осмотр, поэтому расшифровка результатов может быть сложной.

Томография

Радионуклидная томография может быть двух видов:

• однофотонная эмиссионная;
• позитронная эмиссионная.

Первый способ применяется в кардиологии и неврологии. Во время обследования вокруг пациента вращаются гамма-камеры, которые регистрируют излучение с разных проекционных точек. На монитор выводится качественное изображение. С его помощью можно анализировать рассредоточение радиоактивного вещества.

Второй способ возник относительно недавно. Отличается тем, что имеется возможность установить не только размер и форму органов, но уровень обмена веществ и степень функционирования. Этот способ уникален, ведь он позволяет определить патологию до того, как появится возможность диагностировать ее стандартными методами. Зачастую используется для обнаружения рака и наблюдения за его развитием.

У позитропных препаратов очень маленький период полураспада.

Поэтому их нельзя перевозить на большие расстояния. Рядом с позитронным томографом всегда должен находиться циклотрон для добычи соответствующих радиоактивных изотопов.

Нужна ли подготовка к обследованию?

Специальная подготовка нужна лишь в двух случаях:

• для щитовидной железы;
• для легких.

Особенности для обследования щитовидной железы:

• за два месяца до мероприятия исключить все йодсодержащие продукты;
• за месяц до назначенного срока нельзя употреблять L-тироксин и аналогичные средства.

Особенности для обследования легких:

• последний прием пищи за шесть — восемь часов до обследования;
• за 2-3 часа непосредственно перед процедурой нельзя курить;
• за месяц до мероприятия пациент должен проконсультироваться со специалистом о приеме лекарств;
• диагностика проводится только спустя неделю после эндоскопии (если она была назначена пациенту).

Длительность процедуры

Радионуклидная диагностика длится не более тридцати минут. Этого времени достаточно для сбора нужной информации. Длительность зависит от характера болезни и ее течения.

Как проводят радионуклидное обследование

Все помещения лаборатории должны ежедневно подвергаться радиационному и дозиметрическому контролю.

Процедура осуществляется только непосредственно в медицинском центре с участием высококвалифицированных врачей.

1. Испытуемому вводят радиофармацевтический препарат.
2. После этого пациента размещают на диагностическом оборудовании.
3. Дальнейшие действия зависят от выбранной методики.
4. После процедуры пациенту рекомендуется обильное питье.

Фотогалерея

Исследование щитовидной железы Радиоизотопный метод исследования почек Радиологическое исследование печени Онкологическое обследование при помощи гамма-камеры

Расшифровка результатов исследования

Расшифровка полученных результатов осуществляется высококвалифицированным специалистом радиологом. Окончательный диагноз, который основан на анализе всех собранных данных, выносится врачом, направившим пациента на обследование.

Безопасны ли радиофармпрепараты?

В целях исследования пациенту вводят специальный препарат. Доза подбирается таким образом, чтобы нанести больному как можно меньше вреда. Воздействие радиоактивных изотопов на организм во много раз меньше, чем при классическом рентгенологическом обследовании.

Вещество быстро распространяется по организму и выводится, не нанося вреда. Препараты, применяемые врачами, не содержат токсинов, которые могут оставлять после распада вредные остатки.

Сколько стоит радионуклидная и радиоизотопная диагностика?

Стоимость процедуры варьируется в зависимости от региона.

Регион	Стоимость	Фирма
Москва	от 5800 руб.	«ЦКБ РАН»
Челябинск	от 745 руб.	«Эвимед»
Краснодар	от 850 руб.	«ККБ Скал»

Видео

Подбороднее о том, какие есть методы диагностики, можно узнать из видео от канала PediatrRussia.

Источник: cdc-nv.ru